Эта статья является кандидатом в хорошие статьи

Тельце Кахаля

Материал из Википедии — свободной энциклопедии
Перейти к: навигация, поиск
Ядра клеток мыши (синие), содержащие тельца Кахаля (зелёные точки). Изображение получено методом флуоресцентной микроскопии (коилин — маркер телец Кахаля — сращён с зелёным флуоресцентным белком)

Те́льце Каха́ля (ТК) (англ. Cajal body, CB) — ядерная органелла, присутствующая у всех эукариот. Типичный размер телец Кахаля составляет 1—2 мкм, и в одной клетке может содержаться от 0 до 10 ТК[1]. Для телец Кахаля характерно наличие ключевого белка коилина[en] и малых РНК телец Кахаля[en] (англ. small Cajal RNAs; scaРНК). В тельцах Кахаля в высоких концентрациях содержатся малые ядерные рибонуклеопротеины[en] (англ. small nuclear ribonucleoproteins, snRNP) и другие факторы процессинга РНК, подтверждающие, что в тельца Кахаля служат местами сборки и/или посттранскрипционной модификации сплайсирующего аппарата ядра. Кроме того, ТК участвуют в процессинге мРНК гистонов и удлинении теломер[2]. ТК существуют в течение всей интерфазы, однако исчезают в митозе. Биогенез телец Кахаля проявляет свойства самоорганизующейся структуры[3].

История[править | править вики-текст]

Сантьяго Рамон-и-Кахаль (1852—1934)

Как и следует из современного названия, тельце Кахаля впервые было описано Сантьяго Рамоном-и-Кахалем — великим испанским нейроанатомом[en], который в 1906 году получил Нобелевскую премию по физиологии и медицине совместно с Камилло Гольджи за исследования клеточного строения нервной системы. В 1903 году, используя технику импрегнации серебра, Кахаль обнаружил маленькое округлое тельце, которое встречалось в ядрах разных нервных клеток. Он назвал его вспомогательным тельцем (исп. cuerpo accessorio). В ходе своих замечательных морфологических исследований Кахалю удалось наблюдать сплайсирующие крапинки (англ. splicing specles), ядрышко и ядерную мембрану. Те тельца, которые Кахаль назвал cuerpo accessorio, были независимо описаны у самых разных организмов: млекопитающих, земноводных, насекомых и растений. Им были даны самые разнообразные названия: смотанные тельца (англ. coiled bodies) в клетках мыши, крысы и человека, Binnenkörper или эндотельца у насекомых, связанные с ядрышками тельца у растений. Порядок в это множество названий привнесло открытие белка коилина в смотанных тельцах клеток HeLa. Антитела против коилина послужили хорошими маркерами смотанных телец в клетках позвоночных и даже связанных с ядрышками телец в клетках гороха посевного (Pisum sativum). Теперь стало ясно, что гомологичные ядерные органеллы, содержащие коилин, имеются у самых разных эукариот. Чтобы подтвердить эту общность и привести терминологию к единому образцу, для ядерных телец, содержащих коилин, было предложено название «тельца Кахаля»[4]. В 2002 году тельца Кахаля были впервые изолированы из живых клеток (клеток HeLa)[5].

Компоненты[править | править вики-текст]

Images.png Внешние изображения
Image-silk.png Белки, входящие в состав телец Кахаля

Тельца Кахаля являются местами модификации малых ядерных РНК (snРНК) и малых ядрышковых РНК (snoРНК), кроме того, в них происходит сборка и часть жизненного цикла RNP. Для телец Кахаля характерно присутствие белка коилина, snRNP, snoRNP, теломеразных RNP и факторов сборки и созревания RNP, а также комплексов, образованных белком выживания моторных нейронов[en] (SMN). Многобелковый комплекс[en] Integrator, который осуществляет процессинг 3'-концов snРНК и поддерживает целостность ТК, также может быть компонентом ТК[6].

Коилин[править | править вики-текст]

После открытия коилина в клетках HeLa, коилин быстро стал характерным маркером для телец Кахаля в клетках млекопитающих. У человека и мыши коилин имеет примерно одинаковый размер (62,6 кДа и 62,3 кДа соответственно), и между их аминокислотными последовательностями наблюдается высокая степень сходства. У лягушки Xenopus коилин слегка меньше (59,6 кДа), а его аминокислотная последовательность значительно отличается от таковой у двух белков млекопитающих. Вне позвоночных определить гомологов коилина по последовательности аминокислот чрезвычайно трудно. Бесспорные ортологи коилина были описаны у Arabidopsis и Drosophila, однако пока у нематоды Caenorhabditis elegans, дрожжей Saccharomyces cerevisiae и других важных модельных организмов, не относящихся к позвоночным, ортологов коилина обнаружено не было[7].

Несмотря на удобство использования коилина в качестве маркера телец Кахаля, о самом коилине как о белке известно немного, в частности, какие биохимические функции он может выполнять в ТК. Коилин связывается с белком выживания моторных нейронов (SMN) и с различными белками групп Sm и LSm[en], поэтому он может участвовать в сборке или модификации snRNP. У мышей, Arabidopsis и Drosophila были найдены строгие доказательства того, что коилин необходим для формирования ТК. У данио-рерио нокаут гена коилина при помощи морфолино, приводящий к утрате ТК и беспорядочному рассеянию snRNP по ядру, вызывает остановку развития при переходе от стадии 15 сомитов к стадии 16 сомитов, вероятно, из-за нарушения правильного вырезания интронов и сниженного образования нормальных зрелых мРНК. Интересно, что этот эффект может быть уменьшен путём добавления зрелых человеческих snRNP, но не только snРНК или белков snRNP, подтверждая, что у данио-рерио для правильной сборки snRNP необходим коилин и, вероятно, ТК[1]. Нокаут гена коилина у мыши приводит к полулетальному фенотипу (50 % зародышей погибает на стадии внутриутробного развития). Некоторые гомозиготы умирают на стадии эмбрионов, а те из них, которые всё же доживают до взрослого возраста, имеют значительные проблемы с фертильностью и плодовитостью. Выращенные в культуре клетки, полученные от таких нокаутных мышей, не имеют типичных ТК. Вместо этого у них наблюдаются три типа «остаточных» телец, каждое из которых содержит часть компонентов телец Кахаля. У Arabidopsis мутант no cajal body 1 (ncb-1) имеет замену единственного основания в гене коилина, хотя непонятно, действительно ли он совершенно лишён коилина. Гомозиготы ncb-1 полностью жизнеспособны, однако с помощью антител к другим компонентам ТК (U2B и фибрилларин) ТК у них не обнаруживаются при помощи электронной микроскопии. У дрозофилы два различных нулевых[en] мутанта по коилину полностью жизнеспособны в гомозиготном состоянии. В клетках нулевых по коилину мух методами иммуноокрашивания[en] или in situ-гибридизации[en] ТК не выявляются. Таким образом, у этих трёх изученных организмов коилин необходим для нормального формирования ТК, однако ни коилин, ни нормальные ТК не являются необходимыми для жизнеспособности[8].

Изменения в уровне коилина связаны с изменениями содержания нескольких некодирующих РНК, в частности, snРНК U2[en], рРНК, транскрибируемых РНК-полимеразой I[en], и РНК-компонента теломеразы[en]. Кроме того, коилин способен связываться с различными некодирующими РНК, такими как предшественник рРНК 47/45S, snРНК U2 и РНК-компонент теломеразы. Коилин обладает РНКазной активностью, которая особенно важна для процессинга 3'-конца snРНК U2 РНК-компонента теломеразы. Таким образом, коилин способен оказывать влияние на транскрипцию и/или процессинг многих важных некодирующих РНК в клетке[2].

Несмотря на то что коилин многие годы используется в качестве маркера телец Кахаля, а также ту критическую роль, которую он играет в поддержании их структурной целостности, установлено, что коилин также встречается в других особых ядерных тельцах — тельцах гистоновых локусов (англ. histone locus bodies, HLB)[9].

Малые ядерные рибонуклеопротеины (snRNP)[править | править вики-текст]

Коль скоро тельца Кахаля были определены методом иммуноокрашивания антителами против коилина, стало простым использование других антител и in situ-гибридизации для создания каталога типичных компонентов ТК. Вскоре стало понятно, что ТК содержат множество белков и РНК, участвующих в процессинге РНК, в частности, сплайсинге малых ядерных РНК (snРНК) (U1, U2, U4, U5 и U6). Так как собственно сплайсинг не происходит в ТК, было выдвинуто предложение, что ТК может играть некоторую роль в сборке или модификации сплайсирующих snRNP. Биогенез сплайсирующих snRNP — сложный процесс, включающий как ядерные, так и цитоплазматические этапы. Вкратце, транскрипция snРНК происходит в ядре, вслед за чем они экспортируются в цитоплазму. В цитоплазме монометилгуанозиновый кэп на 5'-конце становится триметилированным, и каждая snРНК упаковывается в комплекс из семи консервативных белков группы Sm. Наконец, собранные snRNP возвращаются в ядро. Поскольку snРНК, встречающиеся в тельцах Кахаля, связаны с белками Sm и имеют триметилгуанозиновый кэп, считают, что они уже вернулись в ядро из цитоплазмы. Это подтверждается кинетическими исследованиями, показывающими, что только что поступившие в ядро snRNP сначала отправляются в ТК, после чего появляются в крапинках (кластерах гранул интерхроматина[en]) и, наконец, попадают на хромосомы, где, собственно, и происходит сплайсинг. Модификация специфических нуклеотидов snRNP, вероятно, происходит в ТК. Менее понятно, в какой степени сборка аппарата сплайсинга происходит в ТК. Предполагается, что ТК участвуют в осуществлении последних стадий образования U2 snRNP, и, возможно, сборка U4[en]/U6[en]-U5[en] три-snRNP происходит также в ТК. Также были представлены доказательства, что snRNP рециркулируют через ТК. Очень может быть, что сплайсирующие snRNP проходят из ТК в крапинки на пути к местам синтеза РНК и сплайсинга на хромосомах. Однако степень того, насколько отдельные snRNP организованы в комплексы более высокого порядка в крапинках, неизвестна. Недавние исследования, проведённые на ооцитах земноводных, показали, что snRNP могут рекрутироваться к хромосомам типа ламповых щёток независимо от сборки в зрелые сплайсосомы. Если это верно для всех клеток, то тельца Кахаля могут выполнять лишь ограниченную роль в сборке snRNP в комплексы более высокого порядка[9].

Малые РНК телец Кахаля (scaРНК)[править | править вики-текст]

Мощным шагов вперёд в понимании функций телец Кахаля стало открытие малых РНК телец Кахаля (scaРНК). ScaРНК находятся в близком родстве с малыми ядрышковыми РНК (snoРНК) как по структуре, так и по функциям. Для обеих групп РНК характерно наличие особых мотивов — так называемых бокса C/D и бокса Н/АСА, и обе эти группы принимают участие в посттранскрипционной модификации других РНК. Бокс С/D snoРНК направляет присоединение 2'-O-метильных групп к специфическим остаткам рибозы в рРНК, в то время как бокс Н/АСА опосредует превращение специфических уридинов в псевдоуридин[en]. Фибрилларин функционирует как метилтрансфераза[en], а дискерин/NAP57/CBF5 — как псевдоуридинсинтаза; каждый из этих белков взаимодействует с тремя дополнительными белками, образуя активный фермент. ScaРНК осуществляют схожие реакции с малыми ядерными РНК (snРНК) и отвечают за их метилирование и псевдоуридилирование[1]. Первая открытая и наиболее хорошо изученная РНК класса scaРНК — U85. Эта необычная направляющая РНК (англ. guide RNA) опосредует две модификации: 2'-O-метилирование С45 и псевдоуридилирование U46 в человеческой snРНК U5. Эксперименты по фракционированию клеток и in situ-гибридизации показали, что scaРНК U85 локализуется исключительно в ТК клеток HeLa и Drosophila. Локализация этой РНК отличается от локализации её субстрата — snРНК U5 — которая также в больших количествах содержится в ТК, но, помимо этого, подобно другим snРНК, широко распространена по всему ядру. Локализация U85 и других scaРНК отличается от локализации большинства направляющих РНК, содержащих боксы С/D и Н/АСА, которые концентрируются в ядрышке. Показано, что локализация РНК в ТК в клетках позвоночных зависит от наличия короткой консенсусной последовательности[en], названной САВ-боксом. Родственный, но несколько отличающийся мотив был описан в scaРНК Drosophila. САВ-бокс scaРНК и человека, и дрозофилы связывается с консервативным белком WRAP53 (также известным как белок WD40-repeat[en], TCAB1 и WDR79)[2], который необходим для локализации этих РНК в тельцах Кахаля[10].

Специфическая локализация scaРНК в ТК подтверждает, что метилирование и псевдоуридилирование snРНК происходит в ТК после доставки собранных snRNP в ядро. Эта гипотеза надёжно подтверждается экспериментами с культурой клеток, показывающими, что искусственные субстраты scaРНК модифицировались тогда, когда вводились в ТК, а не в ядрышко. Эта гипотеза также хорошо согласуется с хорошо известной концентрацией фибрилларина в ТК. В то же время маловероятно, что модификация snРНК ограничена ТК, потому что лишённые коилина мухи, у которых отсутствовали ТК, тем не менее, имели нормальные уровни scaРНК, и все их snРНК были модифицированы правильно. Представляется вероятным, что scaРНК и другие компоненты ТК в норме существуют в нуклеоплазме в виде макромолекулярных комплексов[en], которые слишком малы, чтобы быть по отдельности различимыми в обычный световой микроскоп. Коилин необходим для сборки этих комплексов в тельца Кахаля, различимые методами световой микроскопии, однако сборка этих телец не является необходимым условием для функционирования этих комплексов, по крайней мере, для scaРНК-зависимой модификации сплайсирующих snРНК[11]. Возможно, что ТК выполняет роль локальной концентрации реагентов, необходимых для процессинга snРНК, и тем самым повышает его эффективность. Если в силу метаболических особенностей клетки какая-либо стадия созревания snRNP в ТК становится скоростьлимитирующей[en] (как, например, в случае эмбриогенеза данио-рерио, описанном выше), то клетки, лишённые коилина и, следовательно, ТК, оказываются нежизнеспособными[1].

Особой scaРНК, представляющий исключительный интерес, является РНК-компонент теломеразы — фермента, ответственного за поддержания постоянной длины теломер в клетках эукариот. Присутствие теломеразной РНК в ТК было показано методом in situ-гибридизации в линиях человеческих раковых клеток, однако в нераковых клетках её уровни в ТК были низкими или неопределимыми. Теломеразная РНК имеет мотив бокс Н/АСА и САВ-бокс. В ТК раковых клеток человека накапливается также теломеразная обратная транскриптаза[en][1]. В ТК локализуются и другие компоненты теломеразного комплекса — белки дискерин[en], GAR1[en], NHP2[en], NOP10, WRAP53[6]. WRAP53, который связывается с другими scaРНК, является частью холофермента человеческой теломеразы и необходим для синтеза теломер в клетках HeLa[12] (в его отсутствие плюрипотентные клетки были неспособны удлинять свои теломеры[6]). Возможно, коилин участвует в процессинге теломеразной РНК[6].

GEMS и белок SMN[править | править вики-текст]

Исключительно интересным компонентом ТК является белок выживания моторных нейронов (англ. survival motor neuron protein, SMN). Когда внутриклеточную локализацию SMN впервые изучали методом иммунофлуоресценции, белок был виден по всей цитоплазме, а также в ядерном тельце, по размеру схожем с тельцем Кахаля и иногда даже близкого размера, однако отличным от ТК. По этой причине открытое тельце получило название «близнец тельца Кахаля» (англ. Gemini of the CB, GEMS). По случайному совпадению, линия клеток HeLa, на которой были описаны GEMS, необычна: в человеческих клетках других линий, в том числе различных штаммах HeLa, в первичных нейронах, а также в клетках дрозофилы SMN локализуется там же, где и коилин в ТК. По этой причине в общем случае SMN может рассматриваться как важный компонент ТК, а не как маркер отдельного ядерного тельца[12].

Как и следует из названия, у млекопитающих SMN необходим для правильного функционирования моторных нейронов, особенно для расположенных в спинном мозге. У мышей и дрозофилы нулевые мутации в единственной копии гена smn летальны. В случае человека дело обстоит несколько иначе, потому что у человека имеются две копии гена, одна из которых имеет изменённый сайт сплайсинга, приводящий к неэффективному процессингу транскрипта. Не забираясь в глубь довольно непростой генетики человеческого гена smn, можно сказать, что мутации в этом гене часто приводят к развитию состояния, известного как спинальная мышечная атрофия (SMA). SMA имеет место у примерно 1 из 6000 новорождённых и приводит к ранней смерти[13].

Биохимические исследования показали, что в клетках позвоночных SMN находится в макромолекулярном комплексе, известном как ассемблисома (англ. assemblysome). Этот комплекс состоит из самого SMN, семи геминов и нескольких других факторов. Этот комплекс функционирует в цитоплазме как шаперон, принимающий участие в сборке комплекса из сплайсирующих snРНК с семичленным кольцом из белков Sm. SMN сопровождает собранные snRNP на их обратном пути в ядро и облегчает ядерный импорт[en] белков Sm[6], однако неизвестно, имеет ли SMN специфические функции в ядре[14].

Экспрессия человеческого SMN, меченного зелёным флуоресцентным белком, в клетках почкующихся дрожжей показала специфическую локализацию этого белка в небольшой структуре внутри ядрышка, которую авторы исследования назвали ядрышковым тельцем (англ. nucleolar body). Некоторые этапы созревания snoРНК U3 также протекают в этом тельце. Связь с ядрышком, накопление SMN, созревание U3 — всё это свидетельствует в пользу того, что ядрышковое тельце дрожжей эквивалентно тельцу Кахаля более сложных эукариот[14].

Связь телец Кахаля и специфических локусов[править | править вики-текст]

Поскольку ядрышки связаны со специфическими локусами на хромосомах, возникает справедливый вопрос: а не существует ли подобных ассоциаций у телец Кахаля и других ядерных органелл. В случае ТК пока не существует никаких доказательств того, что транскрипция происходит в самом тельце, а потому нет никаких оснований полагать, что ТК, как ядрышки, соответствуют активным генным локусам. Тем не менее, ТК могут формироваться на специфических локусах или перемещаться туда, выступая в качестве переносчика необходимых для этих локусов факторов. Наличие подобных связей подтверждается тем фактом, что ТК в культуре клеток позвоночных демонстрируют предпочтительную ассоциацию с генными локусами, кодирующими snРНК. В этих клетках ТК связаны с кластерами генов не только U1[en], U2[en] и U4, но и с локусами минорных snРНК U11[en] и U12. Было высказано предположение, что snРНК в ТК каким-то образом осуществляют регуляцию транскрипции snРНК в этих локусах по типу обратной связи. Какова бы ни была причина этой ассоциации, связь между ТК и локусами snРНК динамична и зависит от транскрипции, как было показано в ходе недавнего экспериментального анализа. Отрезок индуцибельных генов snРНК U2 был введён в культуру клеток вместе с флуоресцентно-меченым коилином. До тех пор пока отрезок U2 был транскрипционно неактивен, между ним и ТК не существовало никакой особой связи. Однако при индукции транскрипции отрезок U2 переместился очень близко к ТК и в конце концов достиг физического контакта с ним. Это заметное перемещение было нарушено у доминантного отрицательного мутанта по β-актину[en], что подтверждает роль ядерного актина в перемещении хромосомных локусов в ответ на активацию транскрипции[14].

Другая особая связь существует между ТК и теломерами. В течение большей части клеточного цикла теломеразная РНК отмечается только в ТК. Кроме того, было установлено, что в ходе S-фазы ТК образуют временные связи с теломерами. Эти результаты подтвержадют существование специфических взаимодействий между ТК и теломерами в ходе удлинения теломер. Функциональное значение этого явления ещё предстоит определить[14].

Тельца Кахаля и ответ на стресс[править | править вики-текст]

Установлено, что вирусные инфекции, воздействие ультрафиолета, ионизирующего излучения, а также обработка цисплатином и этопозидом — агентами, повреждающими ДНК — разными путями нарушают работу телец Кахаля. Например, ультрафиолет и аденовирусная инфекция запускают образование коилин-содержащих микрофокусов. Интересно, что для повреждения ТК под действием ультрафиолета необходима субъединица активатора протеасомы PA28γ, которая, хотя и не попадает в ТК, влияет на формирование ТК через взаимодействие с коилином, содержащимся в нуклеоплазме. При герпесвирусной инфекции, напротив, коилиновые микрофокусы не образуются, а коилин переносится к повреждённым центромерам в ходе процесса, получившего название интерфазного ответа на повреждение центромер (англ. interphase centromere damage response (iCDR)). Под действием ионизирующего излучения, а также цисплатина или этопозида ТК разрушаются, и коилин релокализуется в ядрышке. Детальные механизмы действия этих агентов на ТК ещё не установлены, однако эти данные говорят о том, что ТК могут участвовать в путях ответа на стресс[2].

Некоторые данные о механизмах участия ТК в ответах на стресс были получены при изучении коилина. Оказалось, что коилин обусловливает ответ клетки на действие цисплатина и регулирует связывание РНК-полимеразы I с промоторами генов рРНК. Связывание коилина с некоторыми некодирующими РНК изменялось под действием цисплатина или этопозида. Таким образом, экспериментальные данные свидетельствуют в пользу того, что ТК (в частности, коилин) принимают участие в путях ответа на стресс, которые регулируют биогенез RNP, а также транскрипцию и процессинг рРНК[2].

Известно, что некоторые другие условия могут влиять на ТК. Факторы внешней среды (например, температура), изменения, связанные с развитием (например, организация ядра в клетках зародыша и взрослого организма), болезненное состояние (такое как трансформация нормальной клетки в раковую) оказывают влияние на ТК. Интересно, что локальное силовое воздействие на поверхность клетки посредством интегринов вызывает нарушения в связывании некоторых белков с ТК (в частности, нарушается связывание коилина в SMN)[2].

Формирование и регуляция[править | править вики-текст]

Установлено, что ингибиторы транскрипции, трансляции, ядерного экспорта, киназной и фосфатазной активности вызывают разборку телец Кахаля и/или перемещение коилина в другие места. Кроме того, ТК, будучи динамическим ядерным тельцем, разбирается при митозе и вновь образуется в G1-фазе клеточного цикла, подобно ядру и ядрышку. Поскольку в разборке ядрышка и ядра при митозе ключевую роль играет фосфорилирование, весьма вероятно, что сборкой и разборкой ТК в ходе клеточного цикла также управляет эта модификация. Действительно, по меньшей мере 20 белков ТК могут фосфорилироваться. Фосфорилирование коилина и SMN влияет на взаимодействие этих белков друг с другом и с snRNP. По всей вероятности, фосфорилирование WRAP53 регулирует взаимодействие этого белка с коилином и SMN, а эти реакции необходимы для правильной сборки ТК[2].

Фосфорилирование может не только изменять белок-белковые взаимодействия в ТК, но и влиять на его активность. У мутантов с дефектным фосфорилированием РНКазная активность коилина снижалась. Кроме того, при гиперфосфорилировании коилина изменялось его связывание с различными некодирующими РНК. Это состояние характеризуется также сниженной самоассоциацией коилина, в результате чего ТК разбирается, хотя обычно это событие приурочено к митозу. Таким образом, фосфорилирование и дефосфорилирование различных компонентов СВ является конечным результатом сигнальных путей, сообщающих о нуждах клетки в белках. Эти пути, вероятно, регулируют ядерные и цитоплазматические этапы биогенеза snRNP. Кроме того, PRMT5 и 7, которые симметрично диметилируют остатки аргинина, могут модифицировать коилин и другие компоненты ТК. Как и фосфорилирование, эта модификация влияет на белок-белковые взаимодействия и локализацию белков, тем самым оказывая влияние на формирование и работу ТК. Наконец, в регуляцию ТК может быть вовлечено сумолирование[en]. Помимо посттрансляционных модификаций, на формирование и состав ТК могут влиять некоторые сигнальные белки[2].

Клиническое значение[править | править вики-текст]

Хотя на данный момент не было установлено чёткой связи между дисфункциями ТК и определёнными заболеваниями человека, некоторые мутации компонентов ТК, как сейчас известно, приводят к развитию определённых расстройств. Так, отсутствие функционального белка SMN1[en] приводит к спинальной мышечной атрофии — дегенеративному расстройству мотонейронов спинного мозга. Мутации в генах, кодирующих членов теломеразного комплекса, приводят к преждевременному старению и врождённому дискератозу[en][6]. Нарушения в различных компонентах ТК могут быть ассоциированы с раковыми заболеваниями[2][15].

Примечания[править | править вики-текст]

  1. 1 2 3 4 5 Mao Y. S., Zhang B., Spector D. L. Biogenesis and function of nuclear bodies. (англ.) // Trends in genetics : TIG. — 2011. — Vol. 27. — № 8. — P. 295–306. — DOI:10.1016/j.tig.2011.05.006 — PMID 21680045. исправить
  2. 1 2 3 4 5 6 7 8 9 Hebert M. D. Signals controlling Cajal body assembly and function. (англ.) // The international journal of biochemistry & cell biology. — 2013. — Vol. 45. — № 7. — P. 1314–1317. — DOI:10.1016/j.biocel.2013.03.019 — PMID 23583661. исправить
  3. The Nucleus, 2011, p. 235
  4. The Nucleus, 2011, p. 235—236
  5. Lam Y. W., Lyon C. E., Lamond A. I. Large-scale isolation of Cajal bodies from HeLa cells. (англ.) // Molecular biology of the cell. — 2002. — Vol. 13. — № 7. — P. 2461–2473. — DOI:10.1091/mbc.02-03-0034 — PMID 12134083. исправить
  6. 1 2 3 4 5 6 Morimoto M., Boerkoel C. F. The role of nuclear bodies in gene expression and disease. (англ.) // Biology. — 2013. — Vol. 2. — № 3. — P. 976–1033. — DOI:10.3390/biology2030976 — PMID 24040563. исправить
  7. The Nucleus, 2011, p. 236
  8. The Nucleus, 2011, p. 236—237
  9. 1 2 The Nucleus, 2011, p. 237
  10. The Nucleus, 2011, p. 237—238
  11. The Nucleus, 2011, p. 238—239
  12. 1 2 The Nucleus, 2011, p. 239
  13. The Nucleus, 2011, p. 239—240
  14. 1 2 3 4 The Nucleus, 2011, p. 240
  15. Henriksson S., Farnebo M. On the road with WRAP53β: guardian of Cajal bodies and genome integrity. (англ.) // Frontiers in genetics. — 2015. — Vol. 6. — P. 91. — DOI:10.3389/fgene.2015.00091 — PMID 25852739. исправить

Литература[править | править вики-текст]

  • The Nucleus / Tom Misteli, David L. Spector.. — New York: Cold Spring Harbor Perpectives in Biology, 2011. — 463 p. — ISBN 978-0-87969-894-2.
  • Альбертс Б., Джонсон А., Льюис Д. и др. Молекулярная биология клетки / Пер. с англ. А. Н. Дьяконовой, А. В. Дюбы и А. А. Светлова. Под ред. Е. С. Шилова, Б. П. Копнина, М. А. Лагарьковой, Д. В. Купраша. — М.—Ижевск: НИЦ «Регулярная и хаотическая динамика», 2013. — С. 559—560. — 2821 с. — ISBN 978-5-4344-0137-1.