Файл:31. Микробиолошки квалитет на млеко.ogg
Исходный файл (составной Ogg-аудио/видеофайл, Theora/Vorbis. Длительность: 4 м 17 с. 1920 × 1080 пкс, битрейт: 9,72 Мбит/с, размер файла: 297,83 МБ)
 | Этот файл находится на Викискладе. Сведения о нём показаны ниже.
Викисклад — централизованное хранилище для свободных файлов, используемых в проектах Викимедиа.
|
Краткое описание
| Описание |
English: Milk quality
- Determining aerobic mesophilic bacteria: 1. Nutrient medium fortified with dehydrated milk to a final concentration of 1% is to be prepared in as many test tubes as samples for analysis. 2. After sterilization at 120°С /15 min, the medium is to be kept in a water bath at 45-50 °С. 3. 1 ml of the sample is to be transferred in the medium. Gentle homogenization between the palms is to be performed before pouring the content in a sterile Petri dish. Circular movements of the plate allow the contents to spread out evenly. 4. Plates are to be incubated at 30 °С for 72 hours. RESULTS: Plates should show growth of aerobic mesophilic bacteria as white colonies. - Determinig presence of Enterobacteriaceae 1. Endo agar (or equivalent) is prepared for the detection of Enterobacteriaceae. 2. After sterilization at 120 °С/15 min, the medium is to be kept in a water bath at 45-50 °С. 3. 1 ml of the sample is to be transferred in the medium. Gentle homogenization between the palms is to be performed before pouring the content in a sterile Petri dish. Circular movements of the plate allow the contents to spread out evenly. 4. After solidification, an agar overlay is to be applied and allowed to solidify as well. Plates are then to be incubated at 37 о C for 24-30 hours. RESULTS: Plates should show growth of green metallic colonies. - Determinig presence of E.coli 1. Test tubes with 9 ml Laurylsulphate+MUG and Durham tubes are prepared for each sample to be analysed. In the test tubes, the Durham tubes are added. 2. Test tubes should be sterilized by autoclaving at 120 °С/15 min. 3. 1 ml of the sample or previously prepared dilution is to be transferred in the medium. 4. Incubation is to be carried out at 30 °С/24 hours. RESULTS: Development of a rose pink coloration and gas elaboration in the Durham tube is indicative of a positive result of the presence of E.coli in the sample. - Determining the presence of Pseudomonas sp. 1. Cetrimide agar (or equivalent) is prepared for the detection of Pseudomonas sp. 2. After sterilization at 120 °С/15 min, the medium is to be kept in a water bath at 45-50 °С. 3. 1 ml of the sample is to be transferred in the medium. Gentle homogenization between the palms is to be performed before pouring the content in a sterile Petri dish. Circular movements of the plate allow the contents to spread out evenly. 4. Incubation is to be carried out at 25 °С/72 hours. RESULTS: Light green colonies represent a positive result for the presence of Pseudomonas. - Determining presence of Staphylococcus aureus. 1. Chapman agar (or equivalent) is prepared for the detection of Staphylococcus aureus. 2. After sterilization at 120 °С/15 min, the medium is to be kept in a water bath at 45-50 °С. 3. 1 ml of the sample is to be transferred in the medium. Gentle homogenization between the palms is to be performed before pouring the content in a sterile Petri dish. Circular movements of the plate allow the contents to spread out evenly. 4. Incubation is to be carried out at 37 °С/24-30 hours. RESULTS: Viable growth of colonies are colonies of Staphylococcus aureus. - Determinig presense of thermophilic lactic: Acid bacteria (LAB) 1. MRS agar (or quivalent) is prepared for the detection of LAB. 2. After sterilization at 120 °С/15 min, the medium is to be kept in a water bath at 45-50 °С. 3. 1 ml of the sample is to be transferred in the medium. Gentle homogenization between the palms is to be performed before pouring the content in a sterile Petri dish. Circular movements of the plate allow the contents to spread out evenly. 4. After solidification, an agar overlay is to be applied and allowed to solidify as well. Plates are then to be incubated at 37 °С for 72 hours. RESULTS: Plates should show the growth of LAB by the presence of distinct white to cloudy colonies. - Determinig presencce of Bacillus cereus. 1. Mossel agar (MYP or equivalent) is prepared for the detection of Bacillus cereus. 2. After sterilization at 120 °С/15 min, the medium is to be kept in a water bath at 45-50 °С. 3. The sample is to be exposed to 70 °С/10 min, in order to selectively target sporulating bacteria. 4. 1 ml of the sample is to be transferred in the medium. Gentle homogenization between the palms is to be performed before pouring the content in a sterile Petri dish. Circular movements of the plate allow the contents to spread out evenly. 5. Incubation is to be carried out at 37 °С/24-30 hours. RESULTS: Plates should show viable growth of Bacillus cereus, should there be presence of the bacterium. - Determining presence of yeasts and molds 1. MEA agar (or equivalent) is prepared for the detection of yeasts and molds. 2. After sterilization at 120 °С/15 min, the medium is to be kept in a water bath at 45-50 °С. 3. 0.1 ml of the sample is to be transferred in the medium. Gentle homogenization between the palms is to be performed before pouring the content in a sterile Petri dish. Circular movements of the plate allow the contents to spread out evenly. 4. Incubation is to be carried out at 25°С/5-7 days. RESULTS: Plates should show the growth of present fungi. Planned and performed by Sofija Kostandinovska, Institute of Biology, FNSM, Ss. Cyril and Methodius University, Skopje, Macedonia.Македонски: Микробиолошки квалитет на млеко
Постапки за определување на број на колонии на аеробни мезофилни бактерии: 1. Се подготвува хранлив медиум за вкупен број на бактерии + 1% млеко во прав за онолку епрувети колку што има примероци за испитување. 2. По автоклавирање на 120 °С /15 минути, медиумот се чува во водено купатило на 45-50 °С. 3. Од претходно приготвениот примерок за испитување, со стерилна пипета се зема 1 ml и содржината се внесува во епрувета со медиум, кој е оладен на 50 °С. Содржината на епруветата се хомогенизира меѓу дланките и се искапува во средина на стерилен празен Петри сад. Со благо промешување на Петри садот се дистрибуира содржината низ садот. 4. Откако агарот ќе стврдне, плочите се превртуваат и се инкубираат на 30 °С за време од 72 часа. РЕЗУЛТАТ: На плочите се забележува раст на аеробните мезофилни бактерии во вид на бели колонии. - Докажување на присуство на Enterobacteriaceae: 1. Се подготвува Ендо агар за докажување на присуство на Enterobacteriaceae. 2. По автоклавирање на 120 °С/15 минути, медиумот се чува во водено купатило на 45-50 °С. 3. Од претходно приготвениот примерок за испитување, со стерилна пипета се зема 1 ml и содржината се внесува во епрувета со медиум, кој е оладен на 50 °С. Содржината на епруветата се хомогенизира меѓу дланките и се искапува во средина на стерилен празен Петри сад. Со благо промешување на Петри садот се дистрибуира содржината низ садот. 4. Откако агарот ќе стврдне, врз него се долева растопен стерилен агар и се остава да стврдне. Откако ќе се стврдне, плочите се превртуваат и се инкубираат на 37 °С за време од 24-30 часа. РЕЗУЛТАТ: На плочите се забележуваат колонии со зелено флуоресцентен сјај. - Докажување на присуство на E.coli: 1. Се приготвуваат епрувети со 9 ml Лаурилсулфат бујон+MUG за секој испитуван примерок. Во епруветите се додаваат и Дарамови цевчиња. 2. Епруветите со подлогите се автоклавираат на 120 °С/15 мин. 3. Во еприветите со стерилна пипета се додава по 1 ml од примерокот или од некое негово разредување. 4. Засејаните епрувети се инкубираат на 30 °С/24 часа. РЕЗУЛТАТ: Позитивен резултат претставува промена на боја на медиумот во розева и присуство на гас во Дарамовото цевче. - Докажување на присуство Pseudomonas sp.: 1. Се подготвува Cetrimide агар за докажување на присуство на Pseudomonas sp. 2. По автоклавирање на 120 °С/15 минути, медиумот се чува во водено купатило на 45-50 °С. 3. Од претходно приготвениот примерок за испитување, со стерилна пипета се зема 1 ml и содржината се внесува во епрувета со медиум, кој е оладен на 50 °С. Содржината на епруветата се хомогенизира меѓу дланките и се искапува во средина на стерилен празен Петри сад. Со благо промешување на Петри садот се дистрибуира содржината низ садот. 4. Откако ќе стврдне, плочите се превртуваат и се инкубираат на 25°С за време од 72 часа. РЕЗУЛТАТ: На плочите се забележуваат светло зелени колонии на Pseudomonas. - Докажување на присуство на Staphylococcus aureus: 1. Се подготвува Chapman агар за докажување на присуство на Staphylococcus aureus. 2. По автоклавирање на 120 °С/15 мин. медиумот се чува во водено купатило на 45-50 °С. 3. Од претходно приготвениот примерок за испитување, со стерилна пипета се зема 1 ml и содржината се внесува во епрувета со медиум, кој е оладен на 50 °С. Содржината на епруветата се хомогенизира меѓу дланките и се искапува во средина на стерилен празен Петри сад. Со благо промешување на Петри садот се дистрибуира содржината низ садот. 4. Откако ќе стврдне, плочите се превртуваат и се инкубираат на 37 °С за време од 24-30 часа. РЕЗУЛТАТ: На плочите се забележува раст на Staphylococcus aureus. - Докажување на присуство на термофилни млечно-кисели бактерии: 1. Се подготвува MRS агар за докажување на присуство на термофилни млечно-кисели бактерии. 2. По автоклавирање на 120 °С/15 мин. медиумот се чува во водено купатило на 45-50 °С. 3. Од претходно приготвениот примерок за испитување, со стерилна пипета се зема 1 ml и содржината се внесува во епрувета со медиум, кој е оладен на 50 °С. Содржината на епруветата се хомогенизира меѓу дланките и се искапува во средина на стерилен празен Петри сад. Со благо промешување на Петри садот се дистрибуира содржината низ садот. 4. Откако агарот ќе стврдне, врз него се долева растопен стерилен агар и се остава да стврдне. Откако ќе стврдне, плочите се превртуваат и се инкубираат на 37 °С за време од 72 часа. РЕЗУЛТАТ: На плочите се забележува раст на термофилни млечно-кисели бактерии. - Докажување на присуство на Bacillus cereus: 1. Се подготвува Mossel агар за докажување на присуство на Bacillus cereus. 2. По автоклавирање на 120 °С/15 минути, медиумот се чува во водено купатило на 45-50 °С. 3. Примерокот се третира на водена бања на 70 °С/10 мин., со цел да останат само спорогените бактерии во примерокот. 4. Од претходно приготвениот примерок за испитување, со стерилна пипета се зема 1 ml и содржината се внесува во епрувета со медиум, кој е оладен на 50 °С. Содржината на епруветата се хомогенизира меѓу дланките и се искапува во средина на стерилен празен Петри сад. Со благо промешување на Петри садот се дистрибуира содржината низ садот. 5. Откако ќе стврдне, плочите се превртуваат и се инкубираат на 37 °С за време од 24-30 часа. РЕЗУЛТАТ: На плочите се забележува раст на Bacillus cereus. Осмислено и изведено од Софија Костандиновска, Институт за биологија, ПМФ, УКИМ, Скопје. |
| Дата | |
| Источник | Собственная работа |
| Автор | Deni Ingilizovski |
|
This biology experiment video was made within the Wikiexperiments 2022 set up by Shared Knowledge.
You can see all the videos in the category Biology Wikiexperiments.
|
|
Лицензирование
- Вы можете свободно:
- делиться произведением – копировать, распространять и передавать данное произведение
- создавать производные – переделывать данное произведение
- При соблюдении следующих условий:
- атрибуция – Вы должны указать авторство, предоставить ссылку на лицензию и указать, внёс ли автор какие-либо изменения. Это можно сделать любым разумным способом, но не создавая впечатление, что лицензиат поддерживает вас или использование вами данного произведения.
- распространение на тех же условиях – Если вы изменяете, преобразуете или создаёте иное произведение на основе данного, то обязаны использовать лицензию исходного произведения или лицензию, совместимую с исходной.
История файла
Нажмите на дату/время, чтобы посмотреть файл, который был загружен в тот момент.
| Дата/время | Миниатюра | Размеры | Участник | Примечание | |
|---|---|---|---|---|---|
| текущий | 19:11, 9 октября 2022 | 4 м 17 с, 1920 × 1080 (297,83 МБ) | Dandarmkd | Uploaded own work with UploadWizard |
Использование файла
Нет страниц, использующих этот файл.
Глобальное использование файла
Данный файл используется в следующих вики:
- Использование в mk.wikipedia.org