Цикл трикарбоновых кислот

Материал из Википедии — свободной энциклопедии
Перейти к: навигация, поиск
Цикл трикарбоновых кислот

Ци́кл трикарбо́новых кисло́т (цикл Кре́бса, цитра́тный цикл, цикл лимо́нной кислоты́[1][2]) — центральная часть общего пути катаболизма, циклический биохимический процесс, в ходе которого ацетильные остатки (СН3СО—) окисляются до углекислого газа (CO2). При этом за один поворт цикла образуется 2 молекулы CO2, 3 NADH, 1 FADH2 и 1 GTP (или ATP)[3]. Электроны, находящиеся на NADH и FADH2, в дальнейшем переносятся на дыхательную цепь[2], где в ходе реакций окислительного фосфорилирования образуется ATP.

Цикл Кребса — это ключевой этап дыхания всех клеток, использующих кислород, центр пересечения множества метаболических путей в организме. Кроме значительной энергетической роли циклу отводится также и существенная пластическая функция, то есть это важный источник молекул-предшественников, из которых в ходе других биохимических превращений синтезируются такие важные для жизнедеятельности клетки соединения как аминокислоты, углеводы, жирные кислоты и др[4].

Цикл превращения лимонной кислоты в живых клетках был открыт и изучен немецким биохимиком Хансом Кребсом, за эту работу он (совместно с Ф. Липманом) был удостоен Нобелевской премии (1953 год)[1].

У эукариот все реакции цикла Кребса протекают внутри митохондрий, а у большинства бактерий реакции цикла протекают в цитоплазме[5].

Общий обзор[править | править вики-текст]

В начале цикла трикарбоновых кислот ацетил-КоА отдаёт свою ацетильную группу четырёхуглеродному соединению — оксалоацетату (щавелевоуксусной кислоте), при этом образуется шестиуглеродный цитрат (лимонная кислота). Ацетил-КоА является промежуточным продуктом окисления таких соединений, как глюкоза (образуется из пирувата в ходе оксилительного декарбоксилирования, пируват образуется из глюкозы в ходе гликолиза), аминокислоты и жирные кислоты[6]. Цитрат затем изомеризуется в также шестиуглеродный изоцитат (изолимонную кислоту), который далее дегидрогенируется и декарбоксилируется до пятиуглеродной кислоты — α-кетоглутарата. α-Кетоглутарат вновь декарбоксилируется, превращаясь в четырёхуглеродный сукцинат. Сукцинат затем в три этапа ферментативно превращается в четырёхуглеродный оксалоацетат, который готов прореагировать с новой молекулой ацетил-КоА. В каждый поворот цикла одна ацетильная группа (т. е. два атома углерода) приходит в цикл в виде ацетил-КоА, и два же атома углерода покидают цикл в виде двух молекул CO2; одна молекула оксалоацетата используется для образования цитрата, и одна же впоследствии регенерируется. Оксалоацетат не покидает цикл, и одна молекула оксалоацетата теоретически может связывать неограниченное количество ацетильных групп и, на самом деле, оксалоацетат присутствует в клетках в очень низких концентрациях. 4 из 8 стадий цикла представляют собой окислительные процессы, и выделяющаяся при этих процессах энергия окисления очень эффективно запасается в виде восстановленных коферментов NADH и FADH2[5].

Как отмечалось выше, хотя цикл трикарбоновых кислот занимает центральное место в энергетическом метаболизме, его роль не сводится к получению и запасанию энергии. 4- и 5-углеродные промежуточные соединения цикла служат предшественниками для синтеза многих соединений. Для восполнения этих промежуточных соединений, покинувших цикл, в клетке существуют специальные анаплеротические реакции (см. ниже)[5].

Как упоминалось выше, все реакции цикла трикарбоновых кислот происходят в митохондриях, и в митохондриях же располагается дыхательная цепь (на внутренней мембране). У большей части бактерий ферменты цикла трикарбоновых кислот находятся в цитозоле, а плазматическая мембрана выполняет функции, аналогичные функциям внутренней мембраны митохондрий[5].

Схема цикла трикарбоновых кислот. I — оксалоацетат, II — цис-аконитат, III — изоцитрат, IV — оксалосукцинат, V — α-кетоглутарат, VI — сукцинил-КоА, VII — сукцинат, VIII — фумарат, IX — малат, X — оксалоацетат, XI — ацетил-КоА. Механизм реакций описывается ниже.

Механизм[править | править вики-текст]

Цикл трикарбоновых кислот включает 8 основных стадий, которые подробно рассматриваются ниже.

Стадия 1: образование цитрата[править | править вики-текст]

Первой реакцией цикла является необратимая конденсация ацетил-КоА с оксалоацетатом с образованием цитрата, катализируемая ферментом цитратсинтазой (реакция 10 на схеме выше):

Oxaloacetate-AcCoA citrate (reaction).png
Фермент Изменение свободной энергии
(ΔG'о, кДж/моль)
Цитратсинтаза -32,2

В этой реакции метильная группа в составе ацетильной группы ацетил-КоА присодеиняется к карбонильной группе (второму атому углерода, С-2) оксалоацетата. В ходе этой реакции в активном центре фермента образуется промежуточное соединение — цитроил-КоА. Оно быстро подвергается гидролизу и расщепляется на свободный КоА и цитрат, которые удаляются из активного центра. Гидролиз этого высокоэнергетичного тиоэфирного промежуточного соединения делает эту реакцию крайне экзергонической. Большое негативное изменение стандартной свободной энергии цитратсинтазной реакции необходимо для управления циклом, поскольку, как отмечалось ранее, в норме концентрация оксалоацетата в клетке очень мала. КоА, высвобождаемый при этой реакции, далее участвует в окислительном декарбоксилировании следующей молекулы пирувата при помощи пируватдегидрогеназного комплекса[7].

Цитратсинтаза

Открытая форма цитратсинтазы
Закрытая форма цитратсинтазы

Цитратсинтаза была закристаллизована, и был проведён её рентгеноструктурный анализ в присутствии и отсутствии её субтстрата и ингибиторов. Каждая субъединица этого гомодимерного фермента представляет собой единый полипептид с двумя доменами, один из которых — крупный и твёрдый, а другой — менее крупный и более пластичный; между этими доменами располагается активный центр фермента. Оксалоацетат — первый из субстраных молекул, связывающихся с цитратсинтазой — индуцирует значительные конформационные изменения в пластичном домене, создавая сайт связывания для молекулы второго субстрата — ацетил-КоА (см. справа). Когда в активном центре фермента образуется цитроил-КоА, в ферменте происходит второе конформационное изменение, обусловленное гидролизом тиоэфира с высвобождением КоА. Эти изменения конформации, вызванные сначала связыванием с субстратом, потом — промежуточным продуктом препятствуют преждевременному и непродуктивному разрыву тиоэфирной связи в ацетил-КоА. Кинетические исследования цитратсинтазы подтверждают описанный выше двусубстратный механизм её работы. Вышеописанная цитратсинтазная реакция представляет собой конденсацию Клайзена, поскольку в ней участвуют тиоэфир (ацетил-КоА) и кетон (оксалоацетат)[7]. Ниже представлен механизм цитратсинтазной реакции:

Citrate Synthase Mechanism Drew Beck revised OH.png
  1. Тиоэфирная связь в ацетил-КоА активирует атомы водорода в метильной группе. Остаток аспартата в активном центре цитратсинтазы забирает протон из метильной группе, образуя промежуточное енольное соединение. Это соединенение стабилизируется водородной связью и/или протонированием с остатком гистидина His274 в активном центре фермента.
  2. Енольное промежуточное соденинение перестраивается и атакует атом углерода в карбонильной группе оксалоацетата, при этом водородная связь с His274 сохраняется. В роли кислоты при атаке оксалоацетата выступает другой остаток гистидина, His320, отдающий оксалоацетату свой протон. В результате конденсации образуется промежуточное соединение цитроил-КоА.
  3. Тиоэфирная связь в цитроил-КоА гидролизуется с высвобождением КоА и образованием цитрата[8].

Стадия 2: образование изоцитрата через цис-аконитат[править | править вики-текст]

Фермент аконитаза (точнее, аконитатгидратаза) катализирует обратимую изомеризацию цитрата в изоцитрат через образование промежуточного соединения — трикарбоновой кислоты цис-аконитата, которая при этом в норме не покидает активный центр. Аконитаза катализирует присоединение воды по двойной связи цис-аконитата, связанного с ферментом, двумя разными способами: в результате одного из них образуется цитрат, в результате другого — изоцитат (реакции 1 и 2 на схеме выше)[7]:

Citrate-isocitrate (reaction).png
Фермент Изменение свободной энергии
(ΔG'о, кДж/моль)
Аконитаза 13,3

Хотя в равновесной смеси при pH = 7,4 и 25 °С содержится менее 10 % изоцитрата, в клетке реакция смещена вправо, поскольку изоцитрат быстро вовлекается в следующую стадию цикла, и его концентрация уменьшается. Аконитаза содержит железосерный кластер, который служит как для связывания субстрата в активном центре, так и для каталитической гидратации или дегидратации. В клетках, не содержащих достаточного количества железа, аконитаза утрачивает свой железосерный кластер и приобретает новую регуляторную роль в метаболизме железа (подробнее см. IRE (биология)). Таким образом, аконитаза является одним из многих ферментов, имеющих две различные функции[8].

Ниже представлена схема, иллюстрирующая, как железосерный кластер аконитазы связывает цитрат и преобразует его в цис-аконитат:

Aconitase ICT to ACT scheme.svg

Стадия 3: окисление изоцитрата до α-кетоглутарата и СО2[править | править вики-текст]

В следующей стадии фермент изоцитратдегидрогеназа катализирует окислительное декарбоксилирование изоцитрата с образованием α-кетоглутарата. Mn2+ (или Mg2+)[9] в активном центре фермента взаимодействует с карбонильной группой промежуточного соединения оксалосукцината, который образуется быстро, однако не покидает активного центра до тех пор, пока он не декарбоксилируется и не превратится в α-кетоглутарат[8].

Ниже подробно рассмотрены эти превращения (реакции 3 и 4 на схеме выше):

IDHcatalyticmechanism.jpg
Фермент Изменение свободной энергии
(ΔG'о, кДж/моль)
Изоцитратдегидрогеназа -7,1[10]
  1. Изоцитрат окисляется при переносе водорода от изоцитрата на NAD+ или NADP+, в зависимости от изозима изоцитратдегидрогеназы (об изозимах см. ниже). В результате оксиления образуется оксалосукцинат.
  2. Декарбоксилирование оксалосукцината усиливается оттягиванием электронов ионом Mn2+ (или Mg2+). В результате образуется енольное промежуточное соединение.
  3. Енольное промежуточное соединение перестраивается, превращаясь в α-кетоглутарат[11].

В клетках обнаружены 2 различных формы (изозима) изоцитратдегидрогеназы. Для работы одной из них нужен NAD+, для другой — NADP+ (причём для работы последней нужен также ион Mg2+, а не Mn2+[9]). Проводимые ими реакции в остальном идентичны. У эукариот NAD-зависимый изозим локализован в митохондриальном матриксе и участвует в цикле трикарбоновых кислот. Главной функцией NADP-зависимого изозима, встречающегося как в митохондриальном матриксе, так и в цитозоле, возможно, является образование NADPH, который необходим для восстановительных анаболических процессов[12].

Стадия 4: окисление α-кетоглутарата до сукцинил-КоА[править | править вики-текст]

В следующей стадии цикла трикарбоновых кислот также происходит окислительное декарбоксилирование, при котором α-кетоглутарат превращается в сукцинил-КоА и СО2 под действием α-кетоглутаратдегидрогеназного комплекса; в качестве акцептора электронов выступает NAD+, а КоА функционирует как переносчик сукцинильной группы. Энергия окисления α-кетоглутарат запасается при образовании тиоэфирной связи в сукцинил-КоА[12] (реакция 5 на схеме выше):

Oxoglutarate-succinyl coa (reaction).png
Фермент Изменение свободной энергии
(ΔG'о, кДж/моль)
α-Кетоглутаратдегидрогеназный
комплекс
-33,5

Эта реакция практически идентична пируватдегидрогеназной реакции окислительного декарбоксилирования пирувата, а α-кетоглутаратдегидрогеназный комплекс чрезвычайно близок к пируватдегидрогеназному комплексу (PDH) по структуре и функциям. Он включает 3 фермента, гомологичных ферментам E1, E2 и E3 PDH, и его кофакторами также являются тиаминпирофосфат (ТРР), липоат, FAD, NAD и кофермент А. Несомненно, оба комплекса имеют общего эволюционного предка. Хотя ферменты E1 обоих комплексов структурно схожи, их аминокислотные последовательности различатся и, конечно, они специфичны к разным субстратам: E1 комплекса PDH связывает пируват, а E1 α-кетоглутаратдегидрогеназного комплекса связывает α-кетоглутарат. Ферменты E2 обоих комплексов также очень похожи, и оба ковалетно связываются с липоатом. Субъединицы E3 обоих комплексов идентичны[13].

Стадия 5: превращение сукцинил-КоА в сукцинат[править | править вики-текст]

Сукцинил-КоА, как и ацетил-КоА, содержит тиоэфирную связь с большой отрицательной стандартной свободной энергией гидролиза (ΔG'о ≈ -36 кДж/моль). В следующей стадии цикла трикарбоновых кислот энергия, выделяемая при разрыве этой связи, используется на образование фосфоангидридной связи в GTP или ATP, при этом сукцинил-КоА превращается в сукцинат[13] (реакция 6 на схеме выше):

Succinyl-coa-succinate (reaction).png
Фермент Изменение свободной энергии
(ΔG'о, кДж/моль)
Сукцинил-КоА-синтетаза -2,9

Эта обратимая реакция катализируется ферментом сукцинил-КоА-синтетазой или сукцинилтиокиназой; из обоих названий этого фермента следует, что в этой реакции участвует нуклеозидтрифосфат[13].

GDP-специфичная сукцинил-КоА-синтетаза в комплексе с GTP

Эта энергозапасающая реакция включает промежуточные этапы, на которых молекула фермента сама становится фосфорилированной по остатку гистидина в активном центре. Эта фосфатная группа, которая имеет высокий потенциал для переноса, переносится на АDP или GDP с образованием ATP или GTP соответственно. В клетках животных имеется два изозима сукцинил-КоА-синтетазы, один из которых специфичен к ADP, а другой — к GDP. Сукцинил-КоА-синтетаза имеет 2 субъединицы: α (Mr = 32 000) которая содержит фосфорилируемый остаток гистидина (His246) и сайт связывания для КоА, а также β (Mr = 42 000), которая обеспечивает специфичность связывания с ADP или GDP. Активный центр находится в промежутке между субъединицами. Кристаллическая структура сукцинил-КоА-синтетазы содержит две «силовые спирали» (англ. power helices), по одной в каждой субъединице, причём эти спирали ориентированы таким образом, что их электрические диполи смещают частично положительные заряды к отрицательно заряженному гистидинфосфату (P—His); благодаря этому стабилизируется промежуточная фосфорилированная форма фермента[14]. Ниже представлена схема реакции, катализируемой сукцинил-КоА-синтетазой:

Вначале сукцинил-КоА фосфорилируется с высвобождением КоА, далее фосфатная группа переносится на остаток гистидина в активном центре сукцинил-КоА-синтетазы, а сукцинат высвобождается. После этого фосфатная группа переносится на нуклеозиддифосфат (NDP, им могут быть ADP или GDP) с образованием нуклеозидтрифосфата (ATP или GTP).

Образование ATP (или GTP) за счёт энергии, запасённой при окислительном декарбоксилировании α-кетоглутарата, является реакцией субстратного фосфорилирования, как и синтез ATP при гликолизе, катализируемый глицеральдегид-3-фосфатдегидрогеназой и пируваткиназой. GTP, синтезированный сукцинил-КоА-синтетазой, может отдать свою терминальную фосфатную группу ADP с образованием ATP в ходе обратимой реакции, катализируемой нуклеозиддифосфаткиназой:

GTP + ADP → GDP + ATP, ΔG'о = 0 кДж/моль.

Таким образом, конечным результатом активности любого изозима сукцинил-КоА-синтетазы является запасание энергии в виде ATP. Изменение энергии Гиббса в нуклеозидифосфаткиназной реакции равно нулю, и ATP и GTP энергетически эквивалентны друг другу[15].

Стадия 6: оксиление сукцината до фумарата[править | править вики-текст]

Сукцинат, образовавшийся из сукцинил-КоА, окисляется в фумарат под действием флавопротеина сукцинатдегидрогеназы[16] (реакция 7 на схеме выше):

Succinate-fumarate (reaction).png
Фермент Изменение свободной энергии
(ΔG'о, кДж/моль)
Сукцинатдегидрогеназа 0
Малонат

У эукариот сукцинатдегидрогеназа прочно связана со внутренней митохондриальной мембраной, у бактерий она располагается на плазматической мембране. Этот фермент содержит 3 различных железосерных кластера и одну молекулу ковалентно связанного с ним FAD, являющегося простетической группой фермента. Электроны с сукцината проходят через FAD и железосерные кластеры, а далее они на носителях электронов попадают на дыхательную цепь переносчиков электронов, расположенную на внутренней мембране митохондрий (плазматической мембране у бактерий). FAD при этом восстанавливается до FADH2, однако фактическим акцептором электронов является убихинон[2]. Переход электронов с сукцината через эти переносчики на конечный акцептор электронов — кислород — сопряжён с синтезом ATP, причём на пару электронов образуется 1,5 моль ATP. Малонат — аналог сукцината, обычно отсутствующий в клетках — является сильным конкурентным ингибитором сукцинатдегидрогеназы, и добавление этого соединения в митохондрии блокирует активность цикла трикарбоновых кислот[16].

Стадия 7: гидратация фумарата до малата[править | править вики-текст]

Обратимая гидратация фумарата с образованием L-малата катализируется ферментом фумаразой (точнее, фумаратгидратазой). Переходным продуктом этой реакции является карбанион[16] (реакция 8 на схеме выше):

Fumarate-L-malate (reaction).png
Фермент Изменение свободной энергии
(ΔG'о, кДж/моль)
Фумараза -3,8

Более детально механизм фумаразной реакции представлен ниже:

FumaraseMechanismE1CB.png

Этот фермент крайне стереоспецифичен: он катализирует гидратацию двойной связи в фумарате (транс-изомер), но не в малеате (цис-изомер фумарата). Фумараза также проявляет стереоспецифичность и при осуществлении обратной реакции: D-малат не может служить субстратом для него[16].

Стадия 8: окисление малата до оксалоацетата[править | править вики-текст]

В последней реакции цикла трикарбоновых кислот NAD-зависимый фермент L-малатдегидрогеназа катализирует окисление L-малата до оксалоацетата[16] (реакция 9 на схеме выше):

L-Malate-oxalacetate.png
Фермент Изменение свободной энергии
(ΔG'о, кДж/моль)
L-малатдегидрогеназа 29,7
Активный центр малатдегидрогеназы со связанным малатом (выделен розовым)

В стандартных термодинамических условиях равновесие этой реакции сильно смещено влево, однако в живой клетке оксалоацетат постоянно вовлекается в высокоэкзергоническую цитратсинтазную реакцию (стадия 1). Так поддерживается крайне низкая концентрация оксалоацетата в клетке (< 10-6 М), благодаря чему равновесие малатдегидрогеназной реакции смещается вправо[16].

Особенности ферментов[править | править вики-текст]

Хотя ферменты цикла трикарбоновых кислот обычно описывают как растворимые компоненты митохондриального матрикса (кроме мембраносвязанной сукцинатдегидрогеназы), всё больше поступает доказательств того, что внутри митохондрий эти ферменты существуют в виде мультиферментых комплексов. Ферменты цикла были успешны выделены из экстрактов разрушенных клеток, однако при этом были разрушены мультибелковые комплексы, образованные за счёт нековалентных слабых взаимодействий одного белка с другим, или со структурным компонентом клетки (мембраной, микротрубочкой, микрофиламентом). Однако при приготовлении клеточного экстракта содержимое клеток, в том числе и ферменты, разбавляется в 100 или 1000 раз[17].

Ряд доказательств говорит о том, что в клетках мультиферментные комплекмы обспечивают эффективный переход продуктов реакций одного фермента к следующему ферменту пути. Такие комплексы называются метаболонами. Несколько ферментов цикла трикарбоновых кислот были изолированы в составе супрамолекулярных комплексов или были обнаружены связанными со внутренней митохондриальной мембраной, или же для них была показана более низкая скорость диффузии, чем для отдельных белков в растворе. Это служит убедительным доказательством обмена субстратами между мультиферментными комплексами и в других метаболических путях, и многие ферменты, считающиеся «растворимыми», в действительности образуют высокорорганизованные комплексы, обменивающиеся промежуточными соединениями[17].

Энергетика[править | править вики-текст]

Выше были рассмотрены реакции, составляющие один оборот цикла трикарбоновых кислот. Двухуглеродная ацетильная группа вошла в цикл, соединясь с оксалоацетатом. Два атома углерода покинули цикл в виде двух молекул СО2, образвавшихся при окислении изоцитрата и α-кетоглутарата. Энергия, выделившаяся при этих реакциях окисления, была запасена в виде восстановленных 3 молекул NADH, одной молекулы FADH2 и одной молекулы ATP или GTP. В конце цикла молекула оксалоацетата регенерируется. Стоит отметить, что те два углеродных атома, которые покидают цикл в виде двух молекул СО2, отличны от тех двух углеродных атомов, которые поступившили в цикл в виде ацетильной группы. Для того, чтобы и они покинули цикл в виде СО2, необходимы дополнительные обороты цикла[3].

Хотя в ходе цикла трикарбоновых кислот непосредственно образуется лишь одна молекула ATP на оборот (при превращении сукцинил-КоА в сукцинат), четыре окислительные реакции цикла обеспечивают дыхательную цепь большим числом электронов, находящихся на NADH и FADH2 и тем самым обеспечивают образование большого количества ATP в ходе окислительного фосфорилирования[3].

В ходе гликолиза из одной молекулы глюкозы образуется две молекулы пирувата, 2 ATP и 2 NADH. В ходе окислительного фосфорилирования переход двух электронов с NADH на O2 обеспечивает образование 2,5 ATP, а переход двух электронов с FADH2 на O2 даёт 1,5 ATP. Когда обе молекулы пирувата окисляются до 6 СО2 пируватдегидрогеназным комплексом и в ходе цикла трикарбоновых кислот, а электроны переносятся на O2 в ходе окислительного фосфорилирования, то суммарный выход ATP составляет 32 молекулы на молекулу глюкозы[3]:

Реакция Выход ATP или восстановленных коферментов Суммарный выход ATP
Глюкоза → глюкозо-6-фосфат -1 ATP -1
Фруктозо-6-фосфат → фруктоно-1,6-бифосфат -1 ATP -1
2 Глицеральдегид-3-фосфат → 2 1,3-бифосфоглицерат 2 NADH 3 или 5 (в зависимости от механизма, используемого для транспорта NADH из цитозоля в митохондриальный матрикс)
2 1,3-бифосфоглицерат → 2 3-фосфоглицерат 2 ATP 2
2 фосфоенолпируват → 2 пируват 2 ATP 2
2 Пируват → 2 ацетил-КоА 2 NADH 5
2 Изоцитрат → 2 α-кетоглутарат 2 NADH 5
2 α-Кетоглутарат → 2 сукцинил-КоА 2 NADH 5
2 Сукцинил-КоА → 2 сукцинат 2 ATP (или 2 GTP) 2
2 Сукцинат → 2 фумарат 2 FADH2 3
2 Малат → 2 оксалоацетат 2 NADH 5
Итого: 30—32

32 молекулы ATP эквивалентны 32 × 30,5 кДж/моль = 976 кДж/моль, что составляет 34 % от теоретического максимума при полном окислении глюкозы — 2 840 кДж/моль. Эти вычисления произведены с учётом стандартных значений изменений свободной энергии, однако, если учитывать реальную нужду клетки в свободной энергии, заключённой в ATP, то эффективность процесса окисления приближается к 65 % от теоретического максимума[18].

Регуляция[править | править вики-текст]

Регуляция ферментов метаболического пути может осуществляться при помощи аллостерических эффекторов и ковалентных модификаций, поддерживая концентрацию промежуточных и конечных продуктов в клетке постоянной и препятствуя их чрезмерному образованию. Переход углеродных атомов от пирувата к циклу трикарбоновых кислот тонко регулируется на двух уровнях: превращение пирувата в ацетил-СоА, стартовое соединение для цикла (пируватдегидрогеназная реакция), и вход пирувата в цикл (цитратсинтазная реакция). Ацетил-КоА образуется не только пируватдегидрогеназным комплексом (PDH), но также при окислении жирных кислот (β-окисление) и некоторых аминокислот, поэтому для регуляции окисления пирувата и цикла трикарбоновых кислот также важен контроль этих путей. Кроме того, цикл регулируется на изоцитрратдегидрогеназной и α-кетоглутаратдегидрогеназной реакциях. Ниже будет рассмотрена регуляция собственно цикла трикарбоновых кислот[19]; о регуляции окислительного декарбоксилирования пирувата см.

Итак, поток поступления метаболитов в цикл трикарбоновых кислот строго регулируется. Поток поступления метаболитов определяется тремя факторами: доступностью субстрата, подавлением накапливающимися продуктами и аллостерическое подавление по типу обратной связи ферментов, катализирующих начальные этапы цикла[20].

Каждая из трёх экзергонических стадий цикла — стадии, катализируемые цитратсинтазой, изоцитратдегидрогеназой и α-кетоглутаратдегидрогеназой — при некоторых условиях могут стать скоростьлимитирующими. Доступность субстратов для цитратсинтазы (ацетил-СоА и оксалоацетата) варьирует в зависимости от состояния клетки и иногда сдерживает скорость образования цитрата. NADH, продукт окисления изоцитрата и α-кетоглутарата, при некоторых условиях накапливается, и при большом значении отношения [NADH]/[NAD+] обе дегидрогеназные реакции строго подавляются. Аналогично, в клетке малатдегидрогеназная реакция находится в строгом равновесии (т. е. она лимитируется субстратом), и при большом значении отношения [NADH]/[NAD+] и низкой концентрации оксалоацетата первая стадия цикла замедляется. Накопление продуктов ограничивает все три лимитирующие стадии цикла: сукцинил-СоА подавляет α-кетоглутаратдегидрогеназу (а также цитратсинтазу); цитрат блокирует цитратсинтазу; конечный продукт, ATP, подавляет цитратсинтазу и изоцитратдегидрогеназу. Подавление цитратсинтазы ATP уменьшает ADP, аллостерический активатор этого фермента. В мышечной ткани позвоночных ионы Са2+, служащие сигналом к сокращению и сопутствующе к увеличению потребности в ATP, активируют изоцитратдегидрогеназу и α-кетоглутаратдегидрогеназу, а также пируватдегидрогеназный комплекс (PDH). Таким обрзом, концентрация субстратов и промежуточных соединений в цикле трикарбоновых кислот задаёт такой поток углерода через него, при котором концентрации образующихся ATP и NADH будут оптимальны[21].

В нормальных условиях скорости гликолиза и цикла трикарбоновых кислот тесно связаны, так что в пируват превращается лишь такое количество глюкозы, чтобы снабдить цикл достаточным количеством «топлива» — ацетильными группами ацетил-СоА. Концентрации пирувата, лактата и ацетил-СоА в норме поддерживаются постоянными. Скорость гликолиза связана со скоростью цикла трикарбоновых кислот не только через ингибирование гликолиза высокими уровнями ATP и NADH, которое характерно и для гликолиза, и для дыхательного этапа окисления глюкозы, но также и концентрацией цитрата. Цитрат, первый продукт цикла трикарбоновых кислот, является важным аллостерическим ингибитором фосфофруктокиназы-1, гликолитического фермента[17].

Значение[править | править вики-текст]

Восьмишаговый циклический процесс окисления простой ацетильной двухуглеродной группы до СO2 может показаться излишне сложным и не отвечающим биологическому принципу максимальной экономии. Однако роль цикла трикарбоновых кислот не исчерпывается оксилением ацетата (а значит, и углеводов, жирных кислот и аминокислот, при окислении которых он образуется). Этот путь составляет сердцевину метаболизма промежуточных соединений. Четырёх- и пятиуглеродные конечные продукты многих катаболических процессов вступают в цикл на промежуточных этапах. Оксалоацетат и α-кетоглутарат, например, являются продуктами катаболизма аспартата и глутамата, которые, в свою очередь, образуются при расщеплении белков. В некоторых метаболических процессах задействованы многие промежуточные соединения цикла, они служат предшественниками во многих анаболических процессах. Таким образом, цикл трикарбоновых кислот является амфиболическим путём, он связывает катаболические и анаболические процессы [22].

Катаболические пути[править | править вики-текст]

Пируват является продуктом окисления углеводов. Далее пируват превращается в ацетил-СоА и вовлекается в цикл трикарбоновых кислот. Кроме того, ацетил-СоА является также продуктом окисления жирных кислот, так что цикл трикарбоновых кислот участвует и в катаболизме жиров[23]. Стоит отметить, что пируват может вовлекаться в цикл трикарбоновых кислот и без превращения в ацетил-КоА, а преобразовавшись в малат под действием малат-фермента[24].

Анаболические пути[править | править вики-текст]

Из α-кетоглутарата, образующегося в цикле трикарбоновых кислот, синтезируются аминокислоты глутамин, глутамат, пролин, аргинин, а также пурины. Сукцинил-КоА служит предшественником для синтеза порфиринов и гема. Цитрат участвует в синтезе жирных кислот и стеролов. Малат может транспортироваться из митохондрий в цитоплазму, где он обратимо превращается в оксалоацетат. Получившийся оксалоацетат может служить предшественником для синтеза аминогислот аспартата, аспарагина, аргинина, метионина, треонина и изолейцина, а также пиримидинов. Он может также превратиться в фосфоенолпируват с затратой GTP, а фосфоенолпируват (ФЕП) может служить предшественником в биосинтезе фенилаланина, тирозина, триптофана, серина, глицина и цистеина. Пируват, получающийся из ФЕП в процессе гликолиза, может стать предшественником для аланина, лейцина и валина, а может участвовать в глюконеогенезе[23][24].

Анаплеротические пути[править | править вики-текст]

Промежуточные соединения цикла трикарбоновых кислот, покинувшие цикл и задействованные в синтезе различных соединений, замещаются за счёт специальных анаплеротических реакций. В нормальных условиях реакции, в ходе которых промежуточные соединения цикла вовлекаются в другие метаболические пути, и реакции, возмещающие их уход, находятся в динамическом равновесии, поэтому концентрация промежуточных соединений цикла трикарбоновых кислот поддерживается постоянной[24].

Ниже в таблице представлены важнейшие анаплеротические реакции[24]:

Реакция Фермент Ткань/организм
Пируват + НСО3- + ATP ↔ оксалоацетат + ADP + Pi Пируваткарбоксилаза Печень, почки
Фосфоенолпируват + СО2 + GDP ↔ оксалоацетат + GTP Фосфоенолпируваткарбоксикиназа Cердце, скелетные мышцы
Фосфоенолпируват + НСО3- ↔ оксалоацетат + Pi Фосфоенолпируваткарбоксилаза Высшие растения, дрожжи, бактерии
Пируват + НСО3- + NAD(P)H ↔ малат + NAD(P)+ Малат-фермент Широко распространена среди эукариот и бактерий

В печени и почках млекопитающих наиболее важной анаплеротической реакцией является обратимое карбоксилирование пирувата с образованием оксалоацетата, катализируемое ферментом пируваткарбоксилазой. Когда в цитратном цикле уменьшается количество оксалоацетата или других промежуточных соединений, пируват карбоксилируется, образуя дополнительный оксалоацетат. Ферментативное добавление карбоксильной группы к пирувату требует энергии, которая берётся из ATP: свободная энергия, необходимая для присоединения карбоксильной группы к пирувату практически равна свободной энергии, которую можно получить из ATP. Пируваткарбоксилаза — регуляторный фермент, и она инактивируется в отсутствие ацетил-СоА — позитивного аллостерического модулятора. Когда же ацетил-СоА — «топливо» для цикла трикарбоновых кислот — присутствует в избытке, он стимулирует пируваткарбоксиназную реакцию и тем самым способствует образованию оксалоацетата, что, в свою очередь, даёт возможность вовлекать в цикл трикарбоновых кислот больше ацетил-СоА. Для осуществления пируваткарбоксилазной реакции необходим витамин биотин, выступающий в качестве простетической группы фермента, переносящей СО2. Биотин должен присутствовать в рационе человека, он содержится во многих продуктах и синтезируется кишечными бактериями[25].

Другие анаплеротические реакции, указанные в таблице выше, также регулируются таким образом, чтобы обеспечивать концентрацию промежуточных соединений, достаточную для работы цикла трикарбоновых кислот. Например, фосфоенолпируваткарбоксилаза активируется фруктозо-1,6-бифосфатом — промежуточным соединением гликолиза, которое накапливается при слишком медленной работе цикла, который не успевает забирать пируват, образующийся при гликолизе[25].

Существуют и другие анаплеротические пути. Аминокислоты гистидин, пролин, аргинин, глутамин и глутамат могут превращаться в α-кетоглутарат и восстанавливать его концентрацию; изолейцин, валин, метионин, триптофан — в сукцинил-СоА, аспартат, фенилаланин и тирозин — в фумарата; аспартат и аспрагин — в оксалоацетата. Аминокислоты аланин, серин, треонин, цистеин и глицин могут преобразовываться в пируват, необходимый для протекания цикла трикарбоновых кислот[23].

Модификации и родственные пути[править | править вики-текст]

Как упоминалось выше, неполный цикл трикарбоновых кислот имеется у некоторых анаэробных организмов. У них он служит не для получения энергии, а для получения предшественников для биосинтетических процессов. Эти организмы используют первые три реакции цикла, чтобы получить α-кетоглутарат, однако, лишённые α-кетоглутаратдегидрогеназы, они не могут осуществлять все превращения цикла. У них, однако, имеются 4 фермента, катализирующих последовательное превращение оксалоацетата в сукцинил-СоА, поэтому они могут образовывать малат, фумарат, сукцинат и сукцинил-СоА из оксалоацетата в ходе реакций, обратных «нормальным» (окислительным) реакциям цикла. Этот путь представляет собой брожение, в ходе которого NADH, образующийся при окислении изоцитрата, переводится с NAD+ восстановлением оксалоацетата до сукцината[22].

У растений, некоторых беспозвоночных и некоторых микроорганизмов (например, дрожжей, Escherichia coli) ацетил-СоА превращается в сукцинат в ходе глиоксилатного цикла, тесно связанного с циклом трикарбоновых кислот. Общее уравнение глиоксилатного цикла выглядит так:

2 Ацетил-СоА + NAD+ + 2H2O → сукцинат + 2СоА + NADH + H+

Образующийся сукцинат далее участвует в биосинтетических процессах. У растений глиоксилатный цикл локализован в особых органеллах — глиоксисомах[26][4].

Эволюция[править | править вики-текст]

Цикл трикарбоновых кислот, как и все другие метаболические пути, является продуктом эволюции, и многие этапы его эволюции произошли до появления аэробных организмов. Он вовсе не является кратчайшим путём окисления ацетата до СO2, однако в процессе естественного отбора оказалось, что он обладает наибольшими преимуществами. Ранние анаэробы, возможно, использовали некоторые реакции цикла трикарбоновых кислот в линейных биосинтетических процессах. В самом деле, некоторые современные анаэробные микроорганизмы используют неполный цикл трикарбоновых кислот, но не как источник энергии, а как источник предшественников для биосинтетических процессов (подробнее см. раздел Модификации). Вместе с эволюцией цианобактерий, образующих O2 из воды, земная атмосфера становилась аэробной, и под влиянием естественного отбора у организмов развивался аэробный метаболизм, гораздо более эффективный, чем анаэробное брожение[22].

Клиническое значение[править | править вики-текст]

Когда механизмы регуляции таких путей, как цикл трикарбоновых кислот, нарушаются, то результатом может стать развитие серьёзного заболевания. Среди людей мутации, затрагивающие ферменты цикла, очень редки, однако те из них, что происходят, имеют губительные последствия. Дефекты гена фумаразы приводят к появлению опухолей гладких мышц (лейомы) и почек; мутации сукцинатдегидрогеназы вызывают рак надпочечников (феохромоцитому). В культурах клеток с такими мутациями накапливаются фумарат (в случае мутаций фумаразы) и, в меньшей степени, сукцинат (в случае мутаций сукцинатдегидрогеназы), и это накопление активирует транскрипционный фактор HIF-1α, индуцируемый гипоксией. Развитие рака может быть следствием состояния псевдогипоксии. В клетках с такими мутациями наблюдается повышенная экспрессия генов, в норме регулируемых HIF-1α. Такие эффекты мутаций генов фумаразы и сукцинатдегидрогеназы указывают, что эти гены функционируют как супрессоры опухолей[27].

История изучения[править | править вики-текст]

Ханс Адольф Кребс

Несколько соединений и реакций цикла трикарбоновых кислот были открыты в 1930 году Альбертом Сент-Дьёрди, в частности, он установил роль фумарата, ключевого компонента цикла. За свои открытия в 1937 году Сент-Дьёрди был удостоен Нобелевской премии по физиологии и медицине[28]. Полностью последовательность реакций и образующихся соединений в 1937 году установил Ханс Адольф Кребс, за что в 1953 году он получил Нобелевскую премию[29] (в честь него цикл трикарбоновых кислот получил одно из своих названий). В 1948 году Э. Кеннеди и Альберт Ленинджер установили, что у эукариот все реакции цикла происходят в митохондриях[5].

Когда около 60 лет назад стали доступны тяжёлый изотоп углерода 13C и радиоактивные изотопы 11C и 14C, они были использованы для того, чтобы проследить путь атомов углерода в цикле трикарбоновых кислот. Один из таких экспериментов дал весьма неожиданные результаты. Ацетат, меченный по гидроксильной группе, был соединён с немеченным оксалоацетатом с образованием меченного цитрата. Поскольку цитрат — симметричная молекула, то предполагалось, что он будет преобразован в α-кетоглутарат, среди которого будут молекулы, меченные по разным атомам углерода. Тем не менее, из клеток был выделен лишь один «сорт» молекул α-кетоглутарата, и исследователи заключили, что цитрат и любая другая симметричная молекула не может промежуточным соединением на пути от ацетата к α-кетоглутарата; они предположили, что в результате конденсации ацетата и оксалоацетата образовывалась несимметричная трикарбоновая кислота, например, цис-аконитат или изоцитрат. В 1948 году Александр Огстон установил прохиральность цитрата (в отсутствие хирального центра склонность к асимметричным реакциям), объяснив тем самым результаты эксперименты и подтвердив, что именно цитрат образуется в первой стадии цикла[30].

Мнемонические правила[править | править вики-текст]

Для более лёгкого запоминания кислот, участвующих в цикле Кребса, существует мнемоническое правило:

Целый Ананас И Кусочек Суфле Сегодня Фактически Мой Обед, что соответствует ряду — цитрат, цис-аконитат, изоцитрат, альфа-кетоглутарат, сукцинил-CoA, сукцинат, фумарат, малат, оксалоацетат.

Существует также следующее мнемоническое стихотворение (его автором является ассистент кафедры биохимии КГМУ Е. В. Паршкова[31]):

Щуку ацетил лимонил,
Но нарцисса конь боялся,
Он над ним изолимонно
Альфа-кетоглутарался.
Сукцинился коэнзимом,
Янтарился фумарово,
Яблочек припас на зиму,
Обернулся щукой снова.

(щавелевоуксусная кислота, лимонная кислота, цис-аконитовая кислота, изолимонная кислота, α-кетоглутаровая кислота, сукцинил-KoA, янтарная кислота, фумаровая кислота, яблочная кислота, щавелевоуксусная кислота).

Другой вариант стихотворения

ЩУКа съела ацетат,
получается цитрат
через цис-аконитат
будет он изоцитрат
водороды отдав НАД,
он теряет СО2
этому безмерно рад
альфа-кетоглутарат
окисление грядет :
НАД похитит водород
В1 и липоат
с коэнзимом А спешат,
отбирают СО2,
а энергия едва
в сукциниле появилась
сразу ГТФ родилась
и остался сукцинат.
вот добрался он до ФАДа,
водороды тому надо
водороды потеряв,
стал он просто фумарат.
фумарат воды напился,
и в малат он превратился
тут к малату НАД пришел,
водороды приобрел
ЩУКа снова объявилась
и тихонько затаилась
Караулить ацетат...

См. также[править | править вики-текст]

Примечания[править | править вики-текст]

  1. 1 2 Трикарбоновых кислот цикл — статья из Большой советской энциклопедии
  2. 1 2 3 Кольман, Рём, 2012, с. 138
  3. 1 2 3 4 Nelson, Cox, 2008, p. 630
  4. 1 2 Кольман, Рём, 2012, с. 140
  5. 1 2 3 4 5 Nelson, Cox, 2008, p. 620
  6. Nelson, Cox, 2008, p. 616
  7. 1 2 3 Nelson, Cox, 2008, p. 622
  8. 1 2 3 Nelson, Cox, 2008, p. 623
  9. 1 2 IUBMB Enzyme Nomenclature: EC 1.1.1.42 (isocitrate dehydrogenase).
  10. Кольман, Рём, 2012, с. 139
  11. Nelson, Cox, 2008, p. 624
  12. 1 2 Nelson, Cox, 2008, p. 625
  13. 1 2 3 Nelson, Cox, 2008, p. 626
  14. Nelson, Cox, 2008, p. 626—637
  15. Nelson, Cox, 2008, p. 627
  16. 1 2 3 4 5 6 Nelson, Cox, 2008, p. 628
  17. 1 2 3 Nelson, Cox, 2008, p. 637
  18. Nelson, Cox, 2008, p. 630—631
  19. Nelson, Cox, 2008, p. 635
  20. Nelson, Cox, 2008, p. 636
  21. Nelson, Cox, 2008, p. 636—637
  22. 1 2 3 Nelson, Cox, 2008, p. 631
  23. 1 2 3 Кольман, Рём, 2012, с. 141
  24. 1 2 3 4 Nelson, Cox, 2008, p. 632
  25. 1 2 Nelson, Cox, 2008, p. 632—633
  26. Nelson, Cox, 2008, p. 638
  27. Nelson, Cox, 2008, p. 637—638
  28. The Nobel Prize in Physiology or Medicine 1937. The Nobel Foundation. Проверено 26 октября 2011.
  29. The Nobel Prize in Physiology or Medicine 1953. The Nobel Foundation. Проверено 26 октября 2011.
  30. Nelson, Cox, 2008, p. 629
  31. К. А. Ефетов, Е. В. Паршкова. Цикл Кребса и мнемоническое правило для запоминания последовательности его реакций (рус.) // Таврический медико-биологический вестник. — 2012. — Т. 15. — № 1 (57). — С. 338-340. — ISSN 2070-8092.

Литература[править | править вики-текст]

  • David E. Metzler. Biochemistry: The Chemical Reactions of Living Cells.. — 2nd edition. — Academic Press, 2003. — Т. 2. — 1973 с. — ISBN 978-0-1249-2541-0
  • David L. Nelson, Michael M. Cox. Lehninger Principles of biochemistry. — Fifth edition. — New York: W. H. Freeman and company, 2008. — 1158 p. — ISBN 978-0-7167-7108-1
  • Campbell N. A., Reece J. B., Urry L. A. e. a. Biology. 9th ed. — Benjamin Cummings, 2011. — 1263 p. — ISBN 978-0-321-55823-7
  • Кольман Я., Рём К.—Г. Наглядная биохимия. — 4-е изд.. — М.: БИНОМ. Лаборатория знаний, 2012. — 469 с. — ISBN 978-5-9963-0620-6
  • Биологическая химия с упражнениями и задачами / Под ред. С. Е. Северина. — М.: Издательская группа «ГЭОТАР-Медиа», 2011. — 624 с.
  • Нетрусов А. И., Котова И. Б. Микробиология. — 4-е изд., перераб. и доп.. — М.: Издательский центр «Академия», 2012. — 384 с. — ISBN 978-5-7695-7979-0

Ссылки[править | править вики-текст]